怀集黄菜发酵微生物群落与理化品质相关性分析

杨晓,李汴生,2*,阮征,2,张德润,李丹丹,雷略焕

(1.华南理工大学食品科学与工程学院,广东广州 510640)(2.广东省天然产物绿色加工与产品安全重点实验室,广东广州 510640)(3.怀集县雷氏食品有限公司,广东肇庆 526432)

怀集黄菜是广东省肇庆市怀集县的一种特色农产品,由独特的金黄色泽而得名“黄菜”,又因其以生长期约六十日的萝卜苗为原料,故得名“六十日”[1]。

调研发现,目前黄菜的生产尚未规模化,仍以小型加工厂和家庭作坊生产为主。黄菜的生产制作沿袭传统工艺,其流程为:萝卜叶采收→整叶→清洗→晾晒→烫漂→沥水→两轮重石压榨→加盐装坛→入埕压实→自然发酵,其制作工艺繁琐、耗时较长,生产效率低下。由于发酵微生物菌系不一,黄菜产品品质不稳定。而目前国内外鲜有对怀集黄菜的研究,其自然发酵过程形成的微生物群落组成尚未被揭示,黄菜的菌种资源也未被利用,传统制作工艺如何影响发酵品质的原理也并不清晰,限制了其规模化和产业化。

怀集黄菜在我国传统发酵蔬菜中独树一帜[2],与韩国马尾萝卜泡菜(Chonggak Kimchi)[3]、印度腌蔬菜(Gundruk)[4]、日本野沢菜(Nozawana)[5]等国外萝卜叶腌菜相比具有地域特色。具体体现在原料和制作工艺上,怀集黄菜以绿色叶菜为主要原料,盐为唯一配料且用量较低的条件下,经干态常温自然发酵,其色泽金黄、口感韧脆,使其从其他发酵叶菜中脱颖而出,其中的菌种资源有待开发。朱琳等[6]对萝卜泡菜微生物菌群的研究显示,在发酵后期,厚壁菌门为主要优势菌门,明串珠菌属(Leuconostoc)、乳球菌属(Lactococcus)、魏斯氏菌属(Weissella)和片球菌属(Pediococcus)为主要菌属。

随着下一代高通量测序技术的发展,食品组学突破了传统培养方法无法展现微生物组全貌的局限[7],成为解析复杂微生物群落的有力工具,尤其是扩增子测序被广泛应用于发酵菜制品的研究中[8,9]。本文采用16S rRNA扩增子测序,以揭示四种代表性的自然发酵黄菜中微生物群落组成,并与理化、质构、色度和感官特性进行相关性分析,初步探究影响成品品质的关键微生物菌种,为黄菜发酵传统工艺的改进和发酵菌种的筛选奠定基础。

1.1 材料与试剂

样品:黄菜样品取自当地规模化的黄菜生产区:甘洒镇、怀城镇、凤岗镇,选取四种由代表性加工厂生产的样品,分别为燕王(YW)、燕都(YD)、绿凤(LF)、酸趣(SQ)。

试剂:孟加拉红琼脂、平板计数琼脂,广东环凯微生物科技有限公司;
磷酸氢二钾、铬酸钾、硝酸银、亚硝酸钠、对氨基苯磺酸、盐酸萘乙二胺等,均为分析纯。

1.2 主要仪器与设备

752N紫外可见分光光度计,上海精密科学仪器有限公司;
TA-XT2物性测试仪,英国 Stable Micro Systems公司;
CR-400便携式色差仪,日本美能达公司;
Aqua Lab水分活度仪,美国 Decagon公司;
DYCP-32C型琼脂糖水平电泳仪,北京市六一仪器厂;
Qubit 2.0荧光定量仪,赛默飞世尔科技(中国)有限公司;
T100 PCR仪,美国Bio-Rad公司。

1.3 理化指标测定

pH值:酸度计法;
水分含量:GB 5009.3-2016《食品安全国家标准食品中水分的测定》的直接干燥法,水分活度:AquaLab水分活度仪检测;
盐度:GB 5009.44-2016《食品安全国家标准食品中氯化物的测定》的银量法;
亚硝酸盐:GB 5009.33-2016《食品安全国家标准食品中亚硝酸盐与硝酸盐的测定》中的分光光度法;
总酸和氨基酸态氮:GB 5009.235-2016《食品安全国家标准食品中氨基酸态氮的测定》中的酸度计法。

1.4 质构测定

选择成熟度相同,最靠近萝卜苗植株根部、粗细均匀、剔除菜叶的黄菜菜茎(宽3 mm,压实厚度为1.5 mm),切分成4 cm长的长条,每种黄菜成品平行测定五次。采用TA.XT2i质构仪HDP/BS探头进行剪切力试验,参数设置为:测前速度5.0 mm/s,测试速度1 mm/s,测后上行速度10.0 mm/s,压缩比为60%,触发力为5 g,以最大剪切力(PPF)及剪切力做功(WS)为黄菜质构特性指标。

1.5 色度测定

黄菜样品的色度采用便携式色差仪测定,以白板校正,菜茎和菜叶分别测量,以L*、a*、b*和总色差值表征[10],分别代表亮度值、红绿度、黄蓝度。

1.6 微生物群落表征

1.6.1 总DNA提取和测序

样品使用无菌袋采集,每份样品包含三个生物学重复。样品在冷藏条件送往实验室,在无菌条件下于磷酸缓冲液中混合均匀,经100 μm滤器去除植物组织,在4 ℃ 12 000 r/min的条件下进行冷冻离心5 min,取离心沉淀采用改良后的 CTAB法提取黄菜微生物总DNA,并通过m=1%琼脂糖凝胶电泳分析DNA的纯度和完整性,使用Qubit 2.0荧光定量仪精确定量DNA浓度。使用 338F(5’-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3’)和 806R(5’-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3’)引物对细菌16S rRNA基因的V3~V4可变区进行扩增,使用Illumina MiSeq 2500平台进行双端测序。

1.6.2 微生物群落结构分析

使用QIIME2的DADA2方法对原始测序数据进行过滤处理,后进行OTU聚类,与silva138/16sbacteria数据库进行比对获得物种注释信息并进行后续分析,Alpha多样性分析、微生物群落与环境因子的冗余分析通过https://www.bioincloud.tech/网站完成。

1.7 感官分析

采用定量描述分析法[11]对黄菜进行感官评定,黄菜性状呈固态不均匀物料,特征感官品质包括外观(色泽、灰度、茎叶的对比度),气味(醇香、酯香、酸香),质构(脆度、硬度、弹性),滋味(酸味、咸味、鲜味)[12]。选择评定论域 U=(外观、气味、质构、滋味、整体可接受度),感官描述定义及标度如表1所示。整体可接受度由各特征按以下权重计算:X=(0.25,0.25,0.25,0.15,0.10),喜好强度采用十分制评分。

表1 黄菜感官指标定义及标度Table 1 Definition of sensory property and preference of Huangcai

在感官分析实验室进行样品制作、样品呈递和评分,由5名感官评审员与5名消费者代表组成感官品评小组,每位评审员均评价4种样品,试验轮数为2。

1.8 数据统计与分析

使用SPSS 17.0进行数据统计,采用Origin Pro 2018C进行绘图。在Python 3.9中进行Spearman相关性分析和p值计算,p<0.05认为具有显著性差异,使用Cytoscape 3.9.0软件可视化微生物群落和代谢物的相关性。

2.1 自然发酵黄菜物种组成分析

图1 四种黄菜样品中细菌在属、种水平的菌群分布Fig.1 Bacterial community of genera and species level in four Huangcai samples

4组样品获得优化序列平均数为229 007条,按照97%的序列相似度归类为可操作分类单元。4种自然发酵黄菜样品中,共检出292个OTUs,14个细菌门和197个细菌属。门水平上,厚壁菌门(Firmicutes,75.48%)占据主导地位,与其他泡菜研究一致[13],其次是变形菌门(Proteobacteria,20.75%)、放线菌门(Actinobacteria,1.92%)、拟杆菌门(Bacteroidetes,1.71%)。黄菜样品中丰度最高的三种优势菌属为乳杆菌属(Lactobacillus,64.18%)、魏斯氏菌属(Weissella,6.09%)、片球菌属(Pediococcus,4.64%),而高苏敏等[14]采用超声、低盐处理发酵的萝卜泡菜中,乳杆菌属、明串珠菌属和假单胞菌属丰度最高;
朱琳等[6]发现亚硝酸盐回落期,明串珠菌属、乳球菌属、魏斯氏菌属和片球菌属为优势菌属。黄菜样品中丰度最高的菌种分别为植物乳杆菌植物亚种(Lactobacillus plantarumsubsp.Plantarum,37.50%)、消化乳杆菌(Lactobacillus alimentarius,10.96%)、食窦魏斯氏菌(Weissellacibaria,5.98%)、乳酸片球菌(Pediococcusacidilactici,4.64%)。其余菌属包括甲基杆菌属(Methylobacterium,2.97%)、假单胞菌属(Pseudomonas,2.97%)、鞘氨醇单胞菌属(Sphingomonas,2.97%)、以及2.26%的Allorthizobium-Neorhizobium-Pararhizobium-Rhizobium,对应到种水平上为莫氏土壤杆菌(Agrobacterium larrymoorei,2.14%)、人参皂苷乳杆菌(Lactobacillusginsenosidimutans,1.66%)、偶氮假单胞菌(Pseudomonas azotoformans,0.78%),为水体、土壤常见菌属和植物内生菌菌属[15]。

2.2 自然发酵黄菜菌群多样性分析

各个样品的Alpha多样性指数见表2,反映各个样品的物种丰富度、均匀度和测序深度。所有样品的覆盖率(Coverage)均在0.99以上,说明测序对样品菌群的覆盖程度较高,能完整反映黄菜细菌菌群的组成。YD黄菜具有最高的ace和chao1指数,说明其物种丰富度最高,物种数量最多。所有样品中,LF黄菜的simpson指数最低而其shannon指数最高,说明其物种多样性最高。其他发酵食品的研究,如坛子肉[16]、萝卜泡菜[6,13]等,均发现在发酵后期,优势菌群逐渐形成规模而抑制其他微生物生长,样品的物种丰富度和多样性均下降。YD、LF黄菜中的菌群结构多样,主导菌属未形成垄断局面,可能由于发酵程度与其他黄菜相比较低,或原料带入的微生物多样性较高。

表2 四种黄菜样品细菌Alpha多样性指数分析Table 2 Alphadiversity of the bacterial community in four Huangcai samples

2.3 自然发酵黄菜菌群与环境因子间的冗余分析

以理化、质构指标为环境因子,对菌属进行冗余分析。如图2所示,各个圆点代表菌属,丰度最高的十种菌属以红色标识,圆点大小与菌属丰度正相关,可见乳杆菌属Lactobacillus为主导菌属。箭头表示的环境因子的长度越长,表示该环境因子对微生物群落的重要性越高,因此盐度、pH值、水分活度、总酸是影响黄菜微生物种群结构的主导因素,而水分含量则影响较小,与张倩等[17]的研究结果一致。pH值、水分活度是影响微生物生长的重要因素,总酸则常与泡菜产品的风味、稳定性相关[9],过高的酸度意味着过熟和酸败,SB/T 10756-2012《中华人民共和国国内行业标准-泡菜》中规定泡菜酸度不得超过1.5 g/100 g(以乳酸计),所有样品中总酸含量均在标准范围内。

图2 属水平上菌群与环境因子的RDA分析Fig.2 Redundancy analysis between bacterial genres and physiochemical factors

由各环境因子箭头之间的夹角余弦值、以及物种点在环境因子的投影可推断,pH值和亚硝酸盐含量显著正相关,而乳杆菌属、片球菌属与pH值和亚硝酸盐含量负相关。Patra等[18]、Shang等[19]的研究也发现,非乳酸菌常为硝酸还原菌,在初始发酵阶段丰度较高,导致了泡菜生产前期亚硝峰形成,而乳杆菌属在发酵后期pH值下降至一定程度后占据主导地位,并抑制硝酸还原菌增殖、降解亚硝酸盐从而降低其含量[20],为泡菜生产的关键菌属。魏斯氏菌属、乳杆菌属与剪切力做功呈正相关关系,说明其对黄菜质构特性有潜在的促进作用。总体来说,乳杆菌属、片球菌属、魏斯氏菌属是影响黄菜品质的主导菌属。

2.4 自然发酵黄菜色度分析

四种黄菜样品的色度指标如表3所示,亮度值L*值越大,说明亮度越高,色泽更鲜艳而灰度较低,其中菜茎的色泽较浅,亮度值较菜叶更容易被感知。YW黄菜菜茎具有最高的亮度值,同时菜叶和菜茎的总色差差值较大,因此菜茎的色泽较鲜艳、对比度明显,感官评价获得较高的评分。a*值为负值时表示绿度,由于黄菜以黄棕色的色泽为主,红绿色调不容易被辨别,因此对黄菜外观影响较小。b*为正值时表示黄色的饱和度,可见LF黄菜具有最高的黄度,但由于其茎、叶的总色差较小,色泽对比度较小,在感官评价中色泽的喜好得分较低。

表3 四种黄菜样品色度指标Table 3 Chromaticity of four Huangcai samples

2.5 自然发酵黄菜感官分析

四种黄菜的感官雷达图如图3所示,结果显示酸香与黄菜的气味、总体接受度评分正相关(p<0.01),对比度与总体接受度评分正相关(p<0.01),因此酸香较高、色泽鲜艳的YW黄菜获得最高的总体接受度。黄菜的香味以酸香、醇香为主,但不同黄菜产品的评分差异较大。感官评价显示,黄菜口感以脆性和内聚力为特色,黄菜菜茎的最大剪切力(179~257 g)远高于韩国泡菜(65.2 g)[21],质构更为坚韧。由于盐度较高,黄菜的味道以咸味为主,因此针对黄菜的低盐发酵工艺有待改进。

图3 四种黄菜感官指标强度雷达图Fig.3 Sensory radar map of four Huangcai samples

2.6 黄菜中种水平群落结构与理化、感官指标相关性

如图4所示,将黄菜种水平中丰度最高的十种菌种与理化、感官指标之间的相关性(Spearman相关系数,|r|>0.6,p<0.05)以网络图的形式可视化,菌种和各指标以节点组表示,其中不同菌属的菌种以颜色区分。节点间连线表示其相关性。十种菌种均显示出了与理化、感官指标的相关性,其中植物乳杆菌植物亚种(S1)、乳酸片球菌(S5)与水分含量呈负相关(p<0.05),说明传统生产工艺中对水分的调控能促进其丰度增加,并促进黄菜的酸味和色泽(p<0.01),为影响黄菜品质的关键菌种。食窦魏斯氏菌(S4)与黄菜的脆性呈正相关关系(p<0.05),与张楠笛等[22]的报道相反,这可能由菌株差异性导致。国内关于泡菜中消化乳杆菌的研究较少,汤伟等[23]的研究显示泡菜中分离的消化乳杆菌具有降解亚硝酸盐、清除胆固醇的能力和抗氧化活性,而在黄菜中,消化乳杆菌(S8)与酯香风味正相关,对黄菜的香气产生有一定促进作用,可能为潜在的优良菌种资源。

图4 黄菜菌种群落与理化指标、感官强度指标的相关性Fig.4 Correlations between species community and physiochemical & sensory properties

本研究通过16S rRNA扩增子测序分析了四种自然发酵怀集黄菜的微生物多样性,并进行了理化、色度、质构和感官特性测定,通过RDA分析和Spearman相关系数表征分析黄菜中的微生物群落和各个指标之间的相关性。结果显示,黄菜中共检测到14个细菌门和197个细菌属,厚壁菌门为主要细菌门(Firmicutes,75.48%),乳杆菌属、魏斯氏菌属、片球菌属、甲基杆菌属、假单胞菌属、鞘氨醇单胞菌和Allorthizobium-Neorhizobium-Pararhizobium-Rhizobium为主要细菌属;
黄菜样品中丰度最高的菌种为植物乳杆菌植物亚种、消化乳杆菌、食窦魏斯氏菌、乳酸片球菌、莫氏土壤杆菌、人参皂苷乳杆菌和偶氮假单胞菌。

感官评价结果发现黄菜产品以酸香、咸味、良好的脆性为特征,相关性分析结果显示,盐度、pH值、水分活度、总酸是影响黄菜微生物群落的主要因素,乳杆菌属、片球菌属与pH值和亚硝酸盐呈负相关关系,魏斯氏菌属是促进黄菜质构品质的主导菌属,而植物乳杆菌植物亚种、乳酸片球菌为促进黄菜酸味和色泽的关键菌种,食窦魏斯氏菌对黄菜质构的保持具有良好作用。

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